У вас вопросы?
У нас ответы:) SamZan.net

Общие принципы спектроскопии Спектральные методы анализа основаны на использовании явления испускания.html

Работа добавлена на сайт samzan.net: 2016-01-17

Поможем написать учебную работу

Если у вас возникли сложности с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой - мы готовы помочь.

Предоплата всего

от 25%

Подписываем

договор

Выберите тип работы:

Скидка 25% при заказе до 10.3.2025

Изучение спектральных свойств оксигемоглобина

Материалы и оборудование: спектрофотометр СФ-46, центрифуга MPW-340, весы для уравновешивания центрифужных пробирок, кровь человека или животного (с антикоагулянтом), 0,85 % NaCl, фосфатный буфер (0,01 моль/л, рН 7,4), пробирки, пипетки, фильтровальная бумага.

Цель работы: построить спектр поглощения раствора оксигемоглобина, охарактеризовать его спектральные свойства.

Ход работы:

  1.  Выделить оксигемоглобин из эритроцитов крови.

Кровь с антикоагулянтом (гепарин) смешивают с изотоническим раствором хлорида натрия (0,85 %) в соотношении ≈ 1:1. Эту смесь центрифугируют в течение 10 мин со скоростью 6000 об/мин на центрифуге МРW-340. Надосадочную жидкость, содержащую плазму и тонкий слой лейкоцитов, удаляют пипеткой Пастера. Осадок смешивают с 0,85 % NaCl и вновь центрифугируют 10 мин при 6000 об/мин. Эту операцию повторяют дважды. К полученному осадку эритроцитов добавляют дистиллированную воду. Мембраны эритроцитов осаждают центрифугированием в течение 20 мин при 8000 об/мин. Надосадочная жидкость содержит в основном раствор оксигемоглобина, который разбавляют дистиллированной водой до требуемой концентрации, при этом оптическая плотность в полосе Соре должна быть равна ≈ 0,8 – 0,9 ед., т.к. при D > 1 резко возрастает погрешность  измерения, а при меньших значениях D414 будет сложно зарегистрировать другие полосы поглощения гембелка.

Концентрацию оксигемоглобина [НbО2] в моль/л определяют спектрофотометрическим способом, применяя для расчета формулу:

[НвО2] = (1,64D576 + 0,64D560 + 0,72D540)/10-4,         (3.11)

где D576, D560 и D540 _- величины оптической плотности раствора оксигемоглобина соответственно при 576, 560 и 540 нм.

В работе используют растворы оксигемоглобина с концентрациями 5·10-4 – 5·10-5 моль/л.

2. Измерить оптическую плотность раствора оксигемоглобина  в диапазоне длин волн от 220 до 750 нм. Измерения производят через 5 нм, в области максимумов – через 1 - 2 нм.

3. Построить спектр поглощения раствора нативного оксигемоглобина.

4. Сделать выводы: охарактеризовать спектральные свойства оксигемоглобина; используя литературные данные, объяснить, какими электронными переходами обусловлены данные максимумы.

Лабораторная работа 3.3

Влияние температуры и УФ-света на спектральные

свойства оксигемоглобина 

Материалы и оборудование: спектрофотометр СФ-46, центрифуга MPW-340, весы для уравновешивания центрифужных пробирок, кровь человека или животного (с антикоагулянтом), 0,85 % NaCl, фосфатный буфер (0,01 моль/л, рН 7,4), термостат, установка для УФ-облучения, пробирки, пипетки, фильтровальная бумага. 

Цель работы: исследовать спектральные свойства термо- и фотомодифицированных растворов оксигемоглобина человека.

Ход работы:

1. Приготовить буферный раствор оксигемоглобина человека (3 - 5·10-4 моль/л) (см. работу № 1 «Изучение спектральных свойств оксигемоглобина»).

2. А. Полученный раствор инкубировать при температуре 45 оС в течение 20 мин.

Б. Полученный раствор (3 мл) облучить УФ-светом через светофильтр УФС-1 (240 – 390 нм) в дозе 1500 Дж/м2.

3.  Измерить оптическую плотность модифицированного (по варианту А или Б) раствора оксигемоглобина в диапазоне длин волн от 220 до 750 нм. Измерения производят через 5 нм, в области максимумов – через 1 -2 нм.

4. Построить спектр поглощения раствора модифицированного оксигемоглобина, сравнить полученные данные со спектром поглощения нативного гембелка, взятого в той же концентрации (контрольный раствор).

5. Сделать выводы о влиянии данных физических факторов (температуры и УФ-света) на структурные свойства гембелка.

Лабораторная работа 3.4

Исследование вклада активных форм кислорода

в процесс фотомодификации оксигемоглобина

Материалы и оборудование: спектрофотометр СФ-46, центрифуга MPW-340, весы для уравновешивания центрифужных пробирок, кровь человека или животного (с антикоагулянтом), 0,85 % NaCl, фосфатный буфер (0,01 моль/л, рН 7,4), D-маннит, установка для УФ-облучения, пробирки, пипетки, фильтровальная бумага. 

Цель работы: исследовать вклад  ОН·-радикалов в фотоиндуцированные изменения структуры оксигемоглобина.

Ход работы:

1. Приготовить буферный раствор оксигемоглобина человека (3 - 5·10-4 моль/л) (см. работу № 1 «Изучение спектральных свойств оксигемоглобина»).

2. Приготовить раствор D-маннита (5,4·10-4 моль/л). D-маннит, как и другие спирты (третичный бутанол, этанол и др.) является активным перехватчиком ОН·-радикалов, образующихся при действии УФ-света.

3. Смешать полученные растворы в объемном соотношении 1:1. Контрольный раствор оксигемоглобина развести дистиллированной водой в той же пропорции.

4. Полученные растворы (3 мл) облучить УФ-светом через светофильтр УФС-1 (240 – 390 нм) в дозе 1500 Дж/м2 .

5. Измерить оптическую плотность полученных растворов оксигемоглобина в диапазоне длин волн от 220 до 750 нм. Измерения производят через 5 нм, в области максимумов – через 1 -2 нм.

6. Построить спектры поглощения растворов УФ-модифицированного и нативного оксигемоглобина.

7. Сравнив полученные спектры поглощения, сделать вывод о вкладе гидроксильных радикалов в фотоиндуцированные изменения структуры оксигемоглобина.

Лабораторная работа 3.5

Исследование спектральных характеристик растворов оксигемоглобина  в присутствии активных форм кислорода

Материалы и оборудование: спектрофотометр СФ-46, центрифуга MPW-340, весы для уравновешивания центрифужных пробирок, кровь человека или животного (с антикоагулянтом), 0,85 % NaCl, фосфатный буфер (0,01 моль/л, рН 7,4), пероксид водорода, сульфат железа (II), пробирки, пипетки, фильтровальная бумага. 

Цель работы: исследовать влияние Н2О2 и ОН·-радикалов на спектральные свойства растворов оксигемоглобина.

Ход работы:

1. Приготовить буферный раствор оксигемоглобина человека (3 - 5·10-4 моль/л) (см. работу № 1 «Изучение спектральных свойств оксигемоглобина»).

2. Приготовить реактив Фентона (2·10-4 моль/л Н2О2 и 1·10-5 моль/л FeSО4). Реактив Фентона является источником ОН·-радикалов, образующихся в реакции:

Fe2+ + H2O2Fe3+ + OH- + OH·.

Гидроксильный радикал является сильнейшим окислителем, он вызывает повреждения молекул белков и нуклеиновых кислот, индуцирует пероксидное окисление липидов, приводит к разрыву СН-связей. Это является причиной сильного мутагенного, канцерогенного и цитотоксического действия данного радикала.

3. А. Смешать раствор оксигемоглобина и реактив Фентона в объемном соотношении 1:1.

Б. Смешать раствор оксигемоглобина и Н2О2 (2·10-4 моль/л) в объемном соотношении 1:1.

Контрольный раствор оксигемоглобина развести дистиллированной водой в той же пропорции.

4. Измерить оптическую плотность полученных растворов оксигемоглобина в диапазоне длин волн от 220 до 750 нм. Измерения производят через 5 нм, в области максимумов – через 1 -2 нм.

5. Построить спектры поглощения растворов модифицированного и нативного оксигемоглобина.

6. Сравнив полученные спектры поглощения, сделать вывод о вкладе гидроксильных радикалов и Н2О2 в изменения спектральных свойств (и структуры) оксигемоглобина.

Контрольные вопросы

1. Что собой представляет система электронных энергетических уровней молекулы?

2. Какие электронные переходы возможны в молекуле?

3. Какие типы электронных переходов обусловливают спектр поглощения в видимой и ультрафиолетовой (УФ) областях спектра?

4. Какие характеристики используют для описания способности целого объекта поглощать свет?

5. Сформулируйте закон Бугера-Ламберта-Бэра. При каких условиях он выполняется?

6. Что собой представляет молярный коэффициент экстинкции? Каков его физический смысл?

7. Что такое спектр поглощения?

8. В каком интервале должны быть величины оптической плотности, чтобы воспроизводимость результатов была не ниже 5%?

9. В каком случае используют метод дифференциальной спектрофотометрии? В чем его преимущества?

10. В чем сущность метода производной спектрофотометрии? Какую информацию можно получить, используя этот метод?

9. Опишите спектральные свойства простых (однокомпонентных) и сложных белков.

10. Какие активные формы кислорода вы знаете? Опишите их физико-химические свойства и биологическую роль.

Рекомендуемая литература

1. Артюхов В.Г. Биофизика: учеб. пособие / В.Г.Артюхов, Т.А.Ковалева, В.П.Шмелев. - Воронеж: Изд-во ВГУ, 1994. – 336 с.

2.  Артюхов В.Г. Оптические методы анализа интактных и модифицированных биологических систем: учеб. пособие / В.Г.Артюхов, О.В.Путинцева. - Воронеж: Изд-во ВГУ, 1996. – 240 с.

3. Аналитическая химия. Физические и физико-химические методы анализа: учебник для вузов / А.Ф.Жуков [и др.]. - М.: Химия, 2001. – 496 с.

4. Булатов М.И. Практическое руководство по фотометрическим методам анализа / М.И.Булатов, И.П.Калинкин. - Л.: Химия, 1986. – 432 с.




1. Реферат- Работа выставочного стенда
2.  Определение услуги
3. на широкую публикув форме диалога
4. тема Фомы была объявлена единственно истинной философией католицизма; таким образом томизм стал идейным ф.html
5. . Изложение как фактического материала так и врачебных размышлений в обосновании диагноза должно быть подч
6. на тему- РОЗВИТОК АВТОМОБІЛЬНОГО ТРАНСПОРТУ В УКРАЇНІ
7. Тема- Введение в программу
8. Электронный бизнес
9. Курсовой проект 2 СТУДЕНТ- Багратян М
10. ТЕМА- САХАРНЫЙ ДИАБЕТ Цель- Изучить этиологию сахарного диабета определить механизмы развития метаболи.html