С.Ж.АСФЕНДИЯРОВ АТЫНДАҒЫ

ҚАЗАҚ ҰЛТТЫҚ МЕДИЦИНА УНИВЕРСИТЕТІ

КАЗАХСКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ  УНИВЕРСИТЕТ ИМЕНИ  С.Д.АСФЕНДИЯРОВА

№

Шаги

1.

Стерилизация – обеспложивание, освобождение от всего живого. В микробиологической практике стерилизации подвергают инструменты, посуду, питательные среды и другие материалы, применяемые в работе. Стерильность может быть достигнута при помощи физических и химических методов.

В практике микробиологии в основном применяются два метода стерилизации:

1.  Воздействие на стерилизуемый объект высокой температуры: кипячение, прокаливание, действие сухого жара, текучего пара и водяного насыщенного пара (под давлением);

•  Кипячение – несложный вид стерилизации. Основной недостаток кипячения заключается в том, что при нем не погибают споры. Этот вид стерилизации широко применяется для обработки шприцев, инструментария, стеклянной и металлической посуды.
•  Прокаливание на огне – наиболее простой, но достаточно надежный вид стерилизации. Применяют для поверхностной стерилизации негорючих и теплоустойчивых предметов, причем непосредственно перед их использованием. Для стерилизации обрабатываемый предмет несколько раз проводят через пламя горелки. Так стерилизуют шпатели, пипетки, никелиновые и платиновые петли и иглы, предметные и покровные стекла и т.д.
•  Суховоздушная стерилизация требует специального оборудования (печь Пастера или иной сухожаровой шкаф). Стерилизуют сухим жаром в шкафах только сухие предметы (посуду, перевязочный материал и т.п.). Закладку материалов следует производить так, чтобы стерилизуемые предметы не касались горячих стенок прибора и нагретый воздух свободно проникал между ними. Стерилизация в сухожаровом шкафу продолжается 45 мин – 1 ч. При 160-1700С.
•  Стерилизацию текучим паром производят в аппарате Коха. Этот способ применяют в тех случаях, когда стерилизуемый объект изменяется при температуре выше 1000С. Текучим паром стерилизуют питательные среды, содержащие мочевину, углеводы, молоко, картофель, желатин и др.

1.  Механический способ стерилизации, основанный на использовании микрофильтров, изготовленных из разных материалов, с различной величиной пор для разных видов микроорганизмов.

•  Стерилизацию фильтрованием применяют в тех случаях, когда стерилизуемые предметы изменяются при нагревании. Фильтрование проводят с помощью бактериальных фильтров, изготовленных из различных мелкопористых материалов. Методом фильтрования стерилизуют питательные среды, содержащие белок, сыворотки, некоторые антибиотики, а также отделяют бактерии от вирусов, фагов и экзотоксинов.

Основными объектами стерилизации в микробиологической лаборатории являются питательные среды, посуда для культивирования микробов, патогенные культуры микробов (их умерщвление), металлические инструменты, перчатки, резиновые изделия и прочие материалы, необходимые в повседневной лабораторной работе.

Дезинфекция – это уничтожение патогенных микробов в объектах внешней среды.

    Дезинфекции подвергают использованный для исследования патологический материал, загрязненную им или культурой патогенных микробов посуду, пипетки, инструменты, рабочее место и т.д.

     В микробиологической практике применяют различные дезинфицирующие вещества:

•  3-5% растворы фенола;
•  5-10% растворы лизола;
•  1-5% растворы хлорамина;
•  3-6% растворы перекиси водорода;
•  1-5% растворы формалина, растворы сулемы в разведении 1:1000 (0,1%);
•  70% спирта и др.

     Загрязненные патологическим материалом или культурами микроорганизмов пипетки (градуированные и пастеровские), стеклянные шпатели, предметные и покровные стекла опускают в стеклянные банки с 3% раствором фенола или перекиси водорода.

      По окончании работы с заразным материалом лаборант должен обработать дезинфицирующим раствором рабочее место и руки. Поверхность рабочего стола протирают кусочком ваты, смоченным 3% раствором фенола. Руки дезинфицируют 1% раствором хлорамина. Для этого ватный шарик или марлевую салфетку смачивают дезинфицирующим раствором и протирают левую кисть, потом правую, а затем моют руки теплой водой с мылом.

      Дезинфекцию, которую проводят на протяжении всего дня по ходу работы, называют текущей, а по окончании работы – заключительной.

5.

Для контроля правильной работы стерилизационных аппаратов среди стерилизуемых предметов можно закладывать запаянные ампулы, содержащие химические вещества, которые плавятся при соответствующей температуре. При суховоздушной стерилизации можно пользоваться сахарозой или обычным сахарным песком, который плавится и окарамеливается при 1700С. Для проверки температуры внутри автоклавов в ампулы помещают небольшое количество одного из приведенных ниже веществ, к которому примешано несколько крупинок красителя (фуксина, метиленового синего и т.д.).  Для приготовления тестов обычно используются следующие вещества:

1.  Бензонафтол (плавится при 1100С)
2.  Антипирин (при 1130С)
3.  Резорцин (при 1190С)
4.  Сера (при 1190С)
5.  Бензойная кислота (при 1200С).

Используются еще тест-полоски для контроля эффективности процесса стерилизации (при 1210С).