Если у вас возникли сложности с курсовой, контрольной, дипломной, рефератом, отчетом по практике, научно-исследовательской и любой другой работой - мы готовы помочь.
Предоплата всего
Подписываем
МІНІСТЕРСТВО АГРАРНОЇ ПОЛІТИКИ УКРАЇНИ
БІЛОЦЕРКІВСЬКИЙ ДЕРЖАВНИЙ АГРАРНИЙ УНІВЕРСИТЕТ
Факультет ветеринарної медицини
Кафедра ветсанекспертизи і патанатомії
МЕТОДИЧНІ ВКАЗІВКИ
для проведення навчальної практики з
патологічної анатомії
м. Біла Церква
2006
УДК 619:616–091(07)
Затверджено радою факультету ветеринарної медицини
Протокол № 3 від 17.11.2005р.
Укладачі: кандидати вет. наук, доценти: Папченко І.В., Утеченко М.В., кандидати вет наук, асистенти: Тирсіна Ю.М., Яхновська О.В.
Методичні вказівки для проведення навчальної практики з патологічної анатомії / І.В. Папченко, М.В. Утеченко, Ю.М. Тирсіна, О.В. Яхновська. – Біла Церква, 2006. – с.
У методичних вказівках викладено програму та завдання навчальної практики; інструменти та спецодяг, що застосовуються в процесі розтину; безпеку праці; послідовність етапів патолого-анатомічного розтину трупів тварин; основи гістологічної техніки.
Для студентів факультету ветеринарної медицини.
Рецензент: д-р вет. наук, професор Рубленко М.В.
© БДАУ, 2006
Мета та завдання навчальної практики
Після вивчення теоретичних основ загальної та спеціальної патологічної анатомії навчальною програмою передбачено клінічну практику, під час якої студенти ознайомляться і відпрацюють практичні питання з дисципліни.
Мета: набуття практичних навиків проведення патоморфологічних досліджень трупів сільськогосподарських тварин різних видів, виявлення патолого-анатомічних змін в організмі, з’ясування причин захворювання і смерті, правильне оформлення документації за результатами розтину.
Завдання:
– ознайомитися з секційним залом, його обладнанням та правилами роботи в ньому;
– провести розтин трупів тварин різних видів;
– оформити документацію за наслідками розтину;
– провести відбір матеріалу для гістологічних досліджень та виконати первинну його обробку;
– ознайомитися з технікою гістологічних досліджень і освоїти деякі методи фарбування гістозрізів;
– ознайомитися з основами музейної справи та виготовити музейні препарати;
– ознайомитися з роботою Сквирського ветсанутильзаводу.
Загальні положення
Клінічна практика в обсязі 30 год на академічну групу проводиться протягом 4-х днів (7,5 год на І день). Кожна академічна група порівну розподіляється на 2 підгрупи, з кожною працює окремий викладач. Місцем проведення практики є секційний зал та лабораторія гістологічного дослідження патологічного матеріалу. За кожною підгрупою в секційному залі закріплено окремий секційний стіл, а в лабораторії гістологічних досліджень – окремі робочі місця.
Режим роботи: у зв’язку з особливостями виконання робіт (проведення розтину, фарбування гістозрізів) перерви надаються за індивідуальним графіком у міру виконання окремих етапів робіт.
Матеріальне забезпечення: інструкція безпеки праці та особистої гігієни при роботі в секційному залі і лабораторії гістологічних досліджень; спеціальний одяг і засоби індивідуального захисту для роботи з трупним матеріалом; набори інструментів для проведення розтину; секційні столи; термостат, мікротоми різних систем, реактиви й фарби для виготовлення гістологічних препаратів; мікроскопи; мийні та дезінфекційні засоби; скляний посуд та фіксуючі розчини для виготовлення музейних препаратів; трупи сільськогосподарських тварин різних видів; зафіксований патологічний матеріал, призначений для виготовлення музейних препаратів та ін.
Характеристика баз навчальної практики
Патолого-анатомічний розтин трупів тварин проводять у спеціально обладнаному приміщенні – секційній залі при ветеринарних клініках Білоцерківського ДАУ. Секційна зала відповідає таким вимогам:
а) секційне приміщення просторе і світле, з вентиляцією; має водопровід з гарячою та холодною водою й ізольовану від загальної мережі каналізацію;
б) співвідношення площі вікон до підлоги становить – 1:4–1:5;
в) витяжна вентиляція розрахована на повну заміну повітря в приміщенні за одну годину;
г) стіни покриті водонепроникним матеріалом (кахель);
д) підлога (цементована або вистелена плиткою) має необхідний ухил для стоку води, яка подається в спеціальний резервуар для знезараження дезінфекційними засобами.
Секційний зал обладнаний тельфером, столами для розтину трупів дрібних та великих тварин. Столи виготовлені з водонепроникного матеріалу, щоб їх можна було легко вимити і продезінфікувати. Крім секційних столів є маленький столик для інструментів, який використовується під час розтину; столи для запису протоколів; шафи, спеціально обладнані для зберігання інструментів, халатів, гумових рукавичок, реактивів та інших матеріалів.
Інструменти та спецодяг, що використовується в процесі розтину
Для проведення розтину потрібно мати такі інструменти: великий черевато-гостроконечний ніж; ножі різних розмірів (залежно від розмірів трупа), які є найбільш універсальними для зняття шкури, відокремлення кінцівок, виконання глибоких розрізів м’язів, розрізу паренхіматозних органів; кілька скальпелів різного розміру з череватим і прямим лезами (використовуються переважно для розтину трупів дрібних тварин і препарування); ніж для дослідження мозку (лезо ножа пряме, тонке, широке, на кінці заокруглене); кишкові ножиці двох розмірів: перші – завдовжки близько 21 см, другі – близько 30 см. Одна бранша ножиць довша за іншу приблизно на 2,5 см і має заокруглений кінець; ножиці різного розміру з ґудзиками на кінцях та із заокругленими кінцями для розрізу судин, бронхів, вивідних каналів залоз; ножиці для перерізування ребер (реберні ножиці); лучкова і листова пилки; подвійна пилка для розтину спинномозкового каналу трупів дрібних тварин; пінцети анатомічні та хірургічні різних розмірів; молоток для розтину (рис. 1–5).
З метою запобігання забрудненню верхнього одягу під час розтину використовують спецодяг: халати, шапочки, клейончасті фартухи і нарукавники, гумові рукавички та чоботи (рис. 6).
|
а |
б |
в |
г |
д |
|
Рис. 1 – Ножі й скальпелі, які використовують у процесі розтину: а) мусат; б) ножі для розтину великих тварин; в) пилчастий ніж; г) великий та малий резекційні ножі; д) скальпелі різного призначення |
|
а |
б |
в |
|
Рис. 2 – Ножиці, які використовують у процесі розтину: а) кишкові ножиці; б) ножиці для розтину судин і вивідних протоків залоз; в) ножиці з прямими браншами |
|
Рис. 3 – а) лучкова пилка; б) листова пилка |
|
а |
б |
в |
|
Рис. 4 – а) реберні щипці; б) долото; в) анатомічний молоток |
|
Рис. 5 – Анатомічні та хірургічні пінцети різних розмірів |
|
Рис. 6 – Спецодяг, що використовують у процесі розтину |
Безпека праці при роботі в секційній залі
1.1 До проходження навчальної практики допускаються студенти після проведення з ними інструктажу (інструкція з безпеки праці №214), ознайомлення з правилами поводження з мікроскопами, гістологічними препаратами, ріжучим інструментом, обладнанням, хімічними речовинами, правилами поведінки в лабораторії та порядком виконання робіт.
1.2. Студенти повинні знати та дотримуватися правил особистої гігієни, підтримувати в чистоті робоче місце, обладнання, чистоту рук у процесі роботи та після її завершення, слідкувати за чистотою халатів та взуття.
1.3. Працювати в гістологічній лабораторії та секційній залі дозволяється тільки в спецодязі (білий халат, косинка або шапочка, гумові рукавички) під контролем викладача чи лаборанта.
1.4. Виконання лабораторних робіт або розтину проводити тільки з дозволу викладача та під його керівництвом.
1.5. У гістологічній лабораторії та секційній залі забороняється вживати їжу, курити, користуватися вогнем, бігати, кричати, псувати столи та інше обладнання.
1.6. Небезпечними та шкідливими виробничими факторами під час виконання робіт є:
– електричний струм освітлювальної мережі;
– хімічні речовини для виготовлення музейних та гістологічних препаратів;
– скляний посуд та ріжучі інструменти, якими можна травмувати руки, при невмілому поводженні з ними.
1.7. Староста групи або черговий по групі мають слідкувати за дотриманням студентами правил безпеки та дисципліни.
1.8. При виявленні зіпсованого обладнання, аварії, травмуванні слід негайно повідомити про це викладача.
1.9. За порушення вимог інструкції студенти несуть моральну та адміністративну відповідальність.
2. Вимоги безпеки перед початком роботи
2.1. Перед початком роботи потрібно одягнути спецодяг, оглянути стан рук. При наявності пошкоджень шкіри ранки обробити йодом і надіти гумові рукавички.
2.2. Відібрати і оглянути інструменти, які будуть використані в процесі розтину. Затуплені ножі та скальпелі підгострити на бруску.
2.3. Керівнику навчальної практики необхідно ознайомити студентів із властивостями хімічних речовин, які використовуються в процесі роботи, та заходами, що запобігають їх негативному впливу на організм.
3. Вимоги безпеки під час роботи
3.1. У період навчальної практики (лабораторія гістодосліджень) студенти повинні займати постійне місце за столом і користуватись закріпленим за цим місцем мікроскопом.
3.2. Працюючи з мікроскопом, дивитися в окуляр слід так, щоб не закривати друге око, виконувати всі правила роботи з мікроскопом і не створювати незручності колегам.
3.3. Щоб запобігти опікам очей, забороняється для освітлення об’єкта дослідження використовувати пряме сонячне світло.
3.4. При освоєнні гістологічної техніки студенти повинні суворо дотримуватись інструкції з виготовлення гістологічних препаратів та не проводити органолептичного дослідження реактивів, які використовуються.
3.5. Виготовляючи музейні препарати, банки слід тримати вертикально, не перехиляти, не стукати ними об сторонні предмети, бо це може призвести до витікання фіксуючої рідини, яка зумовлює токсичний вплив на організм.
3.6. При розтині трупів, підозрілих у захворюваннях, небезпечних і для людини, слід суворо дотримуватися правил особистої гігієни, а при необхідності – використовувати захисні окуляри і гумові рукавички.
3.7. При роботі з ножем слід тримати його за ручку, в долоні. Розрізи органів і тканин слід робити плавним рухом руки, лезо ножа завжди спрямовуючи донизу. Підводити ніж під тканини (спрямовувати лезо вверх і різати в напрямку “до себе” забороняється.
3.8. Відрізані органи та їх частини не можна кидати на стіл, підлогу або порожнини тіла трупа, оскільки бризками забруднюються присутні і навколишнє середовище.
3.9. З метою попереджень взаємних поранень забороняється двом прозекторам одночасно двома ножами різати в одному місці органи і тканини трупа.
3.10. При розрубуванні частин трупа сокирою присутнім необхідно відійти від місця роботи прозектора, щоб не бути забризканим рідинами.
3.11. Розрізати порожнини, наповнені рідким вмістом або газами, потрібно плавно або попередньо проколоти їх голкою.
3.12. Відбираючи матеріал для лабораторних досліджень, слід використовувати чистий посуд і не забруднювати його ззовні. Посуд з відібраним матеріалом етикетують і поміщають у чистий, цілий поліетиленовий мішечок.
3.13. Присутнім при розтині слід дотримуватися правил особистої гігієни, не торкатись до секційного столу і не класти на нього власні речі.
4. Вимоги безпеки в аварійних ситуаціях
4.1. Якщо в аудиторії відчувається запах реактивів і фіксуючої рідини, необхідно негайно усунути джерело розповсюдження запаху і добре провітрити приміщення.
4.2. За наявності несправностей у мікроскопі чи електроприладах негайно повідомити про це керівника практики. Самостійно усувати несправності забороняється.
4.3. При нанесенні собі травми ріжучим інструментом під час розтину роботу припинити. Рану обробити розчином йоду, зупинити кров, накласти бинтову пов’язку або залити колодієм, одягнути гумову рукавичку і закінчити розтин.
5. Вимоги безпеки по завершенні роботи
5.1. По закінченні роботи студенти прибирають робочі місця:
– мікроскопи переводять на мале збільшення і поміщають у шафу;
– музейні препарати розміщують на відповідні місця;
– миють з милом і розставляють для просушування інструменти, які використовувались у процесі розтину;
– миють з милом і дезінфікують секційні столи;
– миють з милом і розвішують для просушування фартухи, нарукавники, гумові рукавички.
5.2. По завершенні розтину в секційній залі проводять поточну дезінфекцію, перед тим ретельно очистивши поверхні об’єктів (столи, підлога). Після механічного очищення їх вимивають струменем гарячої води (70–80оС). Для дезінфекції використовують наступні дезінфекційні засоби: освітлений (відстояний) розчин хлорного вапна; хлорамін Б; кальцинована сода; віркон-S; кристал–700.
Освітлений (відстояний) розчин хлорного вапна готують із хлористого вапна з місткістю активного хлору не менше 25 %. Застосовують розчин 5 %-ного активного хлору з розрахунку 1 л/м2, експозиція 1 год.
Хлорамін Б – використовують при споровій і вегетативній мікрофлорі у вигляді 1–10 %-них розчинів, з розрахунку 1 л/м2, експозиція 1 год.
Кальцинована сода – застосовують 1–2 %-ні розчини для миття і дезінфекції інструментів, кип’ятіння спецодягу.
Віркон-S – препарат широкого спектру дії відносно вірусів, бактерій, у тому числі й до спорових форм, грибів. Для вологої дезінфекції використовують 0,5–10 %-ний розчин із розрахунку 0,2–0,3 л/м3 при експозиції 30 хв.
Кристал-700 – має бактерицидні, мийні властивості. Застосовують
2,5 %-ний розчин препарату з розрахунку 1 л/м2, експозиція 30 хв.
По завершенні дезінфекції необхідно провітрити приміщення протягом 1 год.
Для дезінфекції стічних вод із секційної зали використовують хлорне вапно, яке повинно містити 25 % активного хлору. Враховуючи, що будь-який дезінфекційний засіб не діє миттєво, експозиція повинна становити від 30 хв до 1 год. Витрачають хлорне вапно із розрахунку при спорових інфекціях 25–30 кг на 1 м3 стічних вод, при неспорових – 15–20 кг на 1 м3 стічних вод.
5.3. Після розтину всі присутні миють руки з милом. Прозектори, після належного миття рук з милом, дезінфікують наявними дезінфекційними засобами.
5.4. При порушенні цих правил староста групи або черговий по групі інформують про це викладача.
Послідовність етапів патолого-анатомічного
розтину трупів тварин
Проводячи патолого-анатомічний розтин трупів тварин, лікар-прозектор має дотримуватися певної послідовності у виконанні цієї роботи, а саме:
1. Реєстрація і збір анамнестичних даних.
2. Зовнішній огляд, що включає в себе:
– розпізнавальні ознаки трупа;
– посмертні зміни;
– стан слизових оболонок природних отворів;
– дослідження шкіри та її похідних;
– стан підшкірної клітковини;
– дослідження молочної залози та зовнішніх статевих органів;
– дослідження соматичних (поверхневих) лімфатичних вузлів;
– дослідження скелетних м’язів;
– стан суглобів, кісток, кісткового мозку, сухожилків, зв’язок, сухожильних піхв.
3. Внутрішній огляд, що передбачає розріз стінок природних порожнин тіла (грудної, черевної) та послідовне вилучення і дослідження органів ротової порожнини, ділянки шиї, грудної, черевної та тазової порожнин. За потреби (особливо коли захворювання супроводжувались нервовими розладами) досліджують головний мозок з його оболонками, носову порожнину з придатками.
Якщо для підтвердження діагнозу необхідно провести додаткові лабораторні дослідження, то необхідний матеріал відбирають у процесі дослідження відповідних органів, дотримуючись правил відбору матеріалу. За наслідками розтину відповідальна особа (лікар-прозектор) оформляє документацію – протокол патолого-анатомічного розтину.
1. Реєстрація і збір анамнестичних даних
У цьому розділі зазначають, коли проведено розтин, де (місце проведення), хто робив розтин і в присутності яких осіб, кому належала тварина. Наприклад: “Протокол №1 патолого-анатомічного розтину трупа поросяти, що належало підсобному господарству Білоцерківського комбінату хлібопродуктів. Розтин проведено 21 жовтня 2005 року в секційній залі Білоцерківського державного аграрного університету доцентом лабораторії патологічної анатомії Утеченком М.В. у присутності студентів 2 групи 5 курсу ФВМ та лікаря господарства Однорог Т.М.”. Потім послідовно і достатньо повно записують анамнестичні дані, особливо детально записують ті, які можуть сприяти визначенню причини виникнення захворювання і загибелі тварин (епізоотологічна ситуація в господарстві, годівля, утримання та експлуатація тварин, клінічні прояви хвороби, лікування, лабораторні дослідження тощо).
2. Зовнішній огляд
Зовнішній огляд трупа тварин починають із розпізнавальних ознак: з’ясовують вид, стать, породу, масть, вік, розвиток, вгодованість, приблизну масу тіла, індивідуальний номер (якщо такий є) та окремі прикмети (останні враховуються при дослідженні трупів коней). Обов’язково зазначають посмертні зміни: охолодження і здуття трупа, трупне заклякання скелетних м’язів, утворення трупних гіпостазів та ознак гниття. Потім оглядають шкірний покрив та похідні шкіри. Досліджуючи шкіру, звертають увагу на її еластичність. Останню визначають за тим, як легко шкіра збирається у складку. При наявності у шкірі зрощень, гіперкератозу, кірочок еластичність знижується. Одночасно звертають увагу на колір шкіри в різних ділянках тіла, на її цілісність, наявність висипів, кірочок та інших відхилень від норми. Особливу увагу звертають на шерстний покрив, стан щетини та пір’я. Скуйовдженість шерсті, облисіння, слабке утримування її в шкірі, наявність значної кількості злущеного епідермісу свідчать про порушення обмінних процесів, особливо обміну вітамінів та мікроелементів.
Оглядаючи шкіру, досліджують зовнішні статеві органи у самців та молочну залозу у самок, звернувши увагу на стан слизової оболонки препуціального мішка та паренхіми сім’яників і вимені.
Огляд слизових оболонок природних отворів починають із передньої частини тіла. У ротовій порожнині оглядають слизову оболонку твердого піднебіння, губ, язика, ясен, зуби, звертаючи увагу на їх цілісність, колір, вологість (наявність слизу). При наявності витікань визначають їх характер, кількість, колір, консистенцію, походження.
Носову порожнину починають оглядати з крил носа, а відхиливши їх, визначають стан слизової оболонки. Із носових отворів можливе виділення різних рідин (серозного, слизового, кров’янистого, гнійного ексудату). Тому визначають їх кількість і характер.
Проводячи огляд очей, звертають увагу на наявність кірочок у кутах ока або секрету – слизового, гнійного; забарвлення кон’юнктиви, склери і ступінь посмертного помутніння рогівки; западання або випинання очного яблука.
Оглядаючи слизову оболонку прямої кишки та зовнішніх статевих органів самок, визначають їх колір, цілісність, наявність витікань.
Провівши огляд слизових оболонок та шкіри, починають її знімати. Розрізи роблять по білій лінії від міжщелепного простору до лобкових кісток та по внутрішній поверхні кінцівок. У процесі виконання цієї роботи звертають увагу на стан підшкірної клітковини (наявність набряків, крововиливів, серозно-слизового інфільтрату, сухість підшкірної клітковини), наповнення кровоносних судин кров’ю, її стан (колір крові, рідка чи згорнута). За вмістом жирової тканини в підшкірній клітковині визначають вгодованість тварин (добра, задовільна, незадовільна, виснаження).
Наступним етапом у проведенні зовнішнього огляду є дослідження соматичних лімфовузлів, а саме: підщелепних, поверхневих шийних, колінної складки, надвименних (у самців пахових). Спочатку оглядають сполучну тканину, що оточує лімфатичний вузол, визначають його консистенцію. Консистенція лімфовузлів може бути пружною, коли паренхіма чинить опір при легкому здавлюванні; щільною, коли паренхіма не піддається здавлюванню; зів’ялою, коли паренхіма легко піддається здавлюванню. Потім розрізають лімфовузол, визначаючи, збільшений він чи ні, колір паренхіми, вологість і збереженість характерних структур (малюнок). Лімфатичний вузол вважається збільшеним, якщо краї розрізу не сходяться через незначне випинання паренхіми. Найчастіше лімфатичні вузли збільшуються при розвитку в них запальних процесів (серозного, геморагічного, гнійного, проліферативного) або внаслідок гіперплазії в них малодиференційованих клітин (пухлини, гемобластози). Малюнок лімфовузла визначають за чіткою розмежованістю і відмінністю за кольором між кірковою та мозковою речовинами.
При описанні м’язів звертають увагу на колір, консистенцію, вологість, малюнок (збереження волокнистої структури м’язів на розрізі) та ступінь їх розвитку (слабко, помірно, добре). Консистенція м’язів може бути пружною, коли паренхіма чинить опір при легкому здавлюванні, в’ялою – при дистрофічних процесах, щільною або ущільненою – при некрозах. На розрізі звертають увагу на колір м’язів, їх вологість (зазвичай вони помірно вологі, а при некрозах та ексикозі – сухуваті).
В окремих випадках виникає потреба дослідження суглобів, кісток, кісткового мозку, сухожиль, зв’язок, сухожильних піхв. Суглоби найчастіше досліджуються тоді, коли змінюється їхня природна конфігурація і розміри (при рахіті, артритах), а також при виникненні підозри щодо наявності у них крововиливів (колібактеріоз телят). Розрізають суглоби обережно, запобігаючи проникненню в них крові із перерізаних судин, і звертають увагу на кількість, колір та консистенцію синовіальної рідини. Синовія є прозорою, тягучою рідиною злегка жовтуватого кольору. За наявності в суглобах крововиливів (останні локалізуються за межами суглобових хрящів) синовіальна рідина змінює своє забарвлення до червоного, а інколи набуває кров’янистого вигляду. Кісткову тканину досліджують у тих випадках, коли проводиться диференційна діагностика захворювань обміну речовин з ураженням кісткової тканини (рахіт, фіброзна остеодистрофія, хронічне отруєння препаратами фтору). Дослідженню підлягають переважно трубчаті кістки грудних і тазових кінцівок. Їх відділяють від м’язової тканини, закріплюють у лещатах і розпилюють уздовж. На розпилі вивчають стан компактної та губчатої кісткової речовини (потоншення компактної речовини, збільшення порожнини трубчатої кістки, заміщення червоного кісткового мозку жовтим та ін.).
3. Внутрішній огляд
Його починають з огляду природних порожнин тіла. Спочатку розрізають стінку черевної порожнини. Розріз усіх шарів черевної стінки проводять за мечоподібним хрящем поперек білої лінії, а потім під контролем пальців його розширюють по білій лінії до лобкових кісток. Для кращого огляду внутрішніх органів черевну стінку розрізають по реберній дузі з обох сторін. Слід зауважити, що найкраще доступ до органів черевної порожнини здійснювати, коли трупи дрібних тварин зафіксовані у спинному положенні, великої рогатої худоби – у лівому боковому, коней – у правому боковому. Це пов’язано з особливостями будови органів травлення в цих тварин (у жуйних ліву половину черевної порожнини займає рубець, а у коней у правій половині розташовані сліпа кишка і вентральне та дорсальне положення великої ободової кишки).
Забезпечивши доступ до органів черевної порожнини, оглядають вісцеральний і парієтальний листки серозної оболонки. За відсутності патологічних змін очеревина гладенька і блискуча. З розвитком запальних явищ вона стає тьмяною, набуває більш або менш вираженого червоного забарвлення (запальна гіперемія) і часто несе на собі нашарування ексудату: фібринозного, рідше – гнійного. Звертають увагу на наявність стороннього вмісту та анатомічне положення внутрішніх органів. Сторонній вміст характеризують кількісно і якісно, тобто його об’єм, колір, консистенцію, склад.
Доступ до органів грудної порожнини проводять наступним чином. У дрібних тварин знімають грудну кістку. Найкраще це робити, перерізаючи реберні хрящі з правої, а потім лівої сторони. Виконувати розрізи слід обережно, щоб не розрізати серцеву сорочку і верхівку серця, які кріпляться до тіла грудної кістки. Разом з грудною кісткою відділяють і тканини в ділянці шиї, оглядаючи трахею, стравохід, щитоподібну залозу, гортань. Стернальні кінці першої пари ребер роз’єднують для забезпечення вилучення органів шиї та грудної порожнини.
У великої рогатої худоби або коней доступ до органів грудної порожнини проводять, знявши відповідно праву або ліву грудну стінку. Для цього використовують листову пилку, якою почергово перепилюють стернальні та вертебральні кінці ребер. Значно рідше цю операцію виконують сокирою. При відсутності пилки або сокири можна вилучати ребра поодинці, відрізаючи їх від грудної кістки, роз’єднуючи міжреберні м’язи, а потім зламуючи їх біля хребта. У такому разі в подальшому працювати слід обережно, щоб гострими уламками ребер не завдати собі травм.
Огляд грудної порожнини та її серозного покриву здійснюється таким же чином, як і черевної. Костальна плевра в нормі гладенька, блискуча, і через неї проглядаються міжреберні м’язи, кровоносні судини та ребра. При наявності запальних процесів у легенях можливе зрощення костальної та легеневої плеври в ділянках локалізації верхівкових та серцевих часток легень.
Вилучення органів із порожнин тіла проводиться в певній послідовності. Спочатку вилучають язик. Для цього підрізають м’язи із внутрішньої поверхні нижньої щелепи, дістають верхівку язика і, підтягуючи ЇЇ, підрізають м’язи в ділянці вуздечки язика. Середні членики під’язикової кістки перерізають ножем (у молодих тварин) або використовують реберні ножиці. Підтримуючи однією рукою язик, іншою, використовуючи ніж, підрізають м’які тканини за кістковою основою піднебіння і поетапно відділяють глотку, гортань, трахею та стравохід до входу в грудну порожнину. При вході в грудну порожнину підрізають магістральні судини, які відходять від аорти, та сполучну тканину між хребтом і серцем. Цю процедуру краще виконувати, коли помічник підтягує стравохід і трахею в каудальному напрямі грудної порожнини. Поряд з цим слід ще раз уважно оглянути костальну плевру і звернути увагу на стан, походження і характер вмісту, якщо такий присутній. У великих тварин органи грудної порожнини вилучають окремо (через їх великі розміри і масу), перерізаючи аорту на межі з діафрагмою, а стравохід відпрепаровують. Вилучення органів грудної і черевної порожнин у дрібних тварин проводять без порушення їх анатомічного зв’язку, тобто комплексно, підрізуючи діафрагму і м’які тканини, що утримують печінку, кишечник, нирки. Пряма кишка перерізається ножем при вході в тазову порожнину. Сечовий міхур та органи розмноження самок залишаються в тазовій порожнині.
Вилучені внутрішні органи досліджують у такій послідовності: органи ротової порожнини, ділянки шиї, грудної, черевної та тазової порожнин. Оглядаючи ротову порожнину, звертають увагу на слизову оболонку твердого піднебіння, щік, стан зубів. При порушенні цілісності слизової оболонки (афти, ерозії, виразки), наявності крововиливів, визначають їх поширеність, приблизну кількість, характер пошкоджень та ін. Особливу увагу дослідженню зубів приділяють у тому випадку, коли захворювання зумовлене порушенням обміну речовин (остеодистрофія, гіпотрофія новонароджених), або у старих тварин. За зміною молочних зубів на постійні та характером стирання жувальної поверхні зубів можна визначити приблизний вік тварин.
Язик оглядають з боку слизової оболонки, визначаючи її колір і наліт. У нормі слизова оболонка язика покрита помірною (невеликою) кількістю прозорого слизу, який запобігає її висиханню. При патології може змінюватися колір слизової, порушуватись її цілісність і з’являтися нашарування у вигляді сіро-жовтого нальоту. Потім прощупують м’язи язика, визначаючи їх консистенцію (пружна консистенція м’язів буває за відсутності в них патології; ущільненої консистенції м’язи набувають при актиномікозі та інших хронічних запаленнях). Для огляду стану м’язів язик розрізають уздовж. У зону розрізу повинні потрапити й ті ділянки, які викликали підозру в період прощупування. На розрізі звертають увагу на колір м’язів, їх вологість та збереження малюнка (збереження волокнистої структури м’язів). У м’язах язика великої рогатої худоби та свиней можуть міститися цистицерки. Тому поздовжні розрізи язика у таких тварин проводять обов’язково.
Глотку оглядають із внутрішньої поверхні, розрізаючи її ножицями до входу у стравохід. Звертають увагу на стан слизової оболонки (колір, чим покрита) та мигдалин, що формують лімфоепітеліальне глоткове кільце на межі ротової порожнини й глотки. При розвитку запалення слизова оболонка глотки набрякає, набуває червоного забарвлення і покрита значною кількістю сірого тягучого слизу. Запальні процеси можуть поширюватись і на мигдалини (хронічний перебіг сальмонельозу, туберкульозу), що призводить до розпаду тканин мигдалин і формування кратероподібних виразок.
Стравохід оглядають ззовні, звертаючи увагу на його м’язову оболонку та прилеглу сполучну тканину. У великої та дрібної рогатої худоби в м’язах стравоходу можуть міститися саркоцисти – видовжено-овальної форми світло-сірі утворення, схожі на рисові зерна. Потім ножицями його розрізають аж за легені й оглядають слизову оболонку, звертаючи увагу на її колір та наявність слизу. У курей при А-вітамінній недостатності навколо вивідних протоків залоз формуються рогові пластинки у вигляді горбиків, через що слизова оболонка набуває зернистого вигляду (горбики чітко відчуваються при пальпації слизової оболонки).
Гортань і трахею розрізають ножицями аж до біфуркації бронхів й оглядають їх із внутрішньої сторони, звертаючи увагу на наявність стороннього вмісту, колір слизової оболонки, наповнення кров’ю міжкільцевих кровоносних судин. Стороннім умістом у бронхах і трахеї може бути пінистого вигляду транссудат, що утворюється при набряку легень; слизиста, слизисто-гнійна або фібринозна маса при запаленнях легень; гельмінти і рідше – інше. У курей при інфекційному ларинготрахеїті гортань та верхня третина трахеї часто бувають заповнені зліпком фібрину (обтурація гортані та трахеї), що зумовлює асфіксію і загибель. Колір слизової оболонки гортані і трахеї та наповнення міжкільцевих кровоносних судин кров’ю найчастіше зазнають змін при запаленні цих органів. Незначне наповнення міжкільцевих судин спостерігають при запальній анемії.
Дослідження легень. Вилучені легені спочатку оглядають ззовні, звертаючи увагу на їх колір, стан легеневої плеври і наповненість повітрям. У нормі легенева плевра гладенька, блискуча, а легені рівномірно забарвлені в червоно-сірий колір. Надмірне накопичення в легенях повітря призводить до розвитку емфіземи (частіше – альвеолярної, рідше –інтерстиціальної). Емфізематозні ділянки здіймаються над загальною поверхнею легень, мають світліше забарвлення, еластичні. На розрізі вони сухуваті, з менш вираженим малюнком. При розрізі та прощупуванні емфізематозних часточок легень може відчуватись крепітація (звук розриву дрібненьких міхурців). Іноді в нижній частині легень (гострий край) можна спостерігати безповітряні ділянки (ателектази), які відрізняються від прилеглої тканини темно-червоним кольором і западанням плеври, порівняно із загальною її поверхнею, тобто легенева тканина таких ділянок спадається. На розрізі вона сухувата, темно-червоного кольору, малюнок не виражений. Цей процес можна спостерігати у слаборозвиненого новонародженого молодняку, коли перші дихальні рухи були недостатньо активними і не вся легенева тканина наповнилася повітрям. Значно рідше ателектази можуть розвиватися при накопиченні у плевральних порожнинах транссудату чи ексудату і здавлюванні цими рідинами нижнього краю легень, витісняючи повітря. Такі ателектази не мають чіткої межі і набувають ущільненої або м’ясистої консистенції.
Після огляду ззовні легені прощупують для виявлення ділянок ущільнення, які найчастіше виникають при запаленнях або є наслідком перенесеного запального процесу. Такі осередки чітко відрізняються від прилеглої легеневої тканини своїм кольором. При гострих запаленнях вони мають інтенсивний червоний або навіть темно-червоний колір, а при хронічних – сіро-червоний, сірий, сіро-жовтуватий.
Легені оглядають і на розрізі. Розрізи роблять глибокими в різних ділянках органа, перерізаючи магістральні бронхи. На розрізі визначають колір, вологість та малюнок і обов’язково – характер вмісту в легенях. Для цього на відрізану частину легень натискують пальцями і спостерігають, що виділяється із перерізаних бронхів. За відсутності патології з них виділяється повітря, а із судин – кров. Якщо присутній набряк, то з бронхів виділяється світла піниста рідина. У такому разі легені мають тістувату консистенцію (прощупуванням органа це визначити неможливо). Якщо досліджувані частки легень втягнуті в гострий запальний процес ексудативного типу, то при натискуванні на тканину з бронхів виділятиметься ексудат:
– при серозному запаленні – світла, злегка каламутна рідина;
– при геморагічному –кров’яниста рідина;
– при фібринозному – зліпки або стовпчики фібрину;
– при гнійному – сіро-жовтувата або сіро-зеленувата гнійна маса;
– при катаральній бронхопневмонії – сірий тягучий слиз.
Хронічні запалення супроводжуються розростанням клітин сполучної тканини і заміщенням нею структур легеневої тканини. Тому на розрізі такі ділянки сірого кольору, структура легень не виражена і спостерігаються тяжі чи осередки сполучної тканини, яка може рубцюватися. При виявленні в легенях інфекційних гранульом (туберкульозних, аспергільозних та ін.) можна бачити, що центральну їх частину займає коагуляційний некроз (казеозний некроз), а периферія оточена грануляційною тканиною або навіть сполучнотканинною капсулою. У некротизовану тканину можуть відкладатися солі кальцію. Таким чином, у легенях можуть розвиватися численні різноманітні патологічні процеси, і для їх виявлення слід чітко дотримуватися послідовності й техніки дослідження.
Дослідження серця починають з огляду серцевої сорочки, тобто, як вона відділяється від серця і чи перикард не має стороннього вмісту. Стороннім умістом може бути транссудат (водянка серцевої сорочки) або ексудат (серозний, фібринозний, геморагічний, гнійний). Потім оглядають серце, звертаючи увагу на його колір, стан епікарда та розміри серця. Колір серця змінюється при розвитку в ньому дистрофічних явищ (міокардозу) або запалення (міокардиту). Епікард у нормі гладенький, блискучий. Через нього добре проглядаються м’язи і кровоносні судини. На епікарді може відкладатися фібрин, а у птахів – у вигляді білої аморфної маси солі сечової кислоти. Часто він буває пронизаний крапковими крововиливами. У виснажених тварин на місці підепікардіального жиру утворюються драглеподібні інфільтрати (слизова дистрофія сполучної тканини), що свідчить про відсутність резервного енергетичного матеріалу.
Розміри серця можуть змінюватися з двох причин – внаслідок гіпертрофії та дистрофії. Гіпертрофічні явища спостерігаються досить рідко і є компенсаторним механізмом при пороках клапанного апарату серця. У такому разі відбувається розширення порожнин відповідних шлуночків і значне потовщення їх м’язової стінки. М’язова тканина набуває червоно-сіруватого забарвлення. При розвитку дистрофії (білкової зернистої та жирової) серце також збільшується за рахунок розширення найчастіше правого шлуночка. Цей процес характеризується збільшенням об’єму правого шлуночка (він пасивно розтягується венозною кров’ю, що надходить до серця по краніальній і каудальній порожнистих венах) і одночасним потоншенням його стінки. Міокард набуває плямистого сірого або сіро-жовтуватого забарвлення.
Щоб дослідити порожнини серця, його розрізають. Серце беруть у ліву руку й розташовують таким чином, щоб верхівка його спрямовувалась до прозектора, а основа – у протилежний бік, ліва половина серця – вправо, а права – вліво. Якщо серце має великі розміри, то його розташовують таким же чином на секційному столі. Спочатку розрізають передсердя, спрямовуючи лезо ножа поперек серця, а потім шлуночки. Правий шлуночок розрізають уздовж міжшлуночкової перегородки, відступивши від неї, а лівий – подібним чином і, не доходячи до верхівки серця, спрямовують лезо вправо. У птахів серце фіксують трьома пальцями за основу, і розріз проходить через верхівку та обидва шлуночки аж до передсердь. На розрізі порожнин серця спостерігають за їх умістом, тобто, кров згорнута чи ні, який вона має колір. Наявність білих згустків крові вказує на тривалий агональний період. Порожнини серця промивають водою від крові й оглядають клапани правої та лівої порожнин, звертають увагу на стан ендокарда. У нормі він світло-сірого кольору, гладенький, блискучий. Найбільш частою патологією, що розвивається в порожнинах серця, є крововиливи, які локалізуються в ендокарді шлуночків і клапанах, набуваючи плямистого вигляду або навіть невеличких гематом у клапанному апараті (при колібактеріозі в новонароджених телят). Значно рідше можна спостерігати тромбоендокардит, який здебільшого виявляється у свиней, що перехворіли хронічною формою бешихи. Потім досліджують середню оболонку серця – міокард. Сухим ножем проводять розріз стінки серця в місці локалізації капілярних м’язів (у місці прикріплення хордальних струн клапанів), оскільки в таких ділянках стінка найтовща. На розрізі міокарда визначають колір, вологість та малюнок. Ці показники набувають змін при дистрофіях міокарда (міокард набуває плямистого сірого або сіро-жовтуватого кольору, стає сухуватим і втрачає природний малюнок).
Дослідження серця завершують розрізом магістральних судин, що від нього відходять. Спочатку розрізають легеневу артерію, а потім аорту, вводячи бранші ножиці з боку шлуночків. Основну увагу звертають на стан півмісячних клапанів і на внутрішню оболонку. У старих тварин в інтимі аорти можна виявити атероматозні бляшки, а в новонароджених телят, хворих колібактеріозом, – множинні поперечні надриви інтими. Слід знати, що при сепсисі та деяких гострих септичних захворюваннях ендокард та інтима магістральних судин можуть набувати темно-червоного кольору через швидку імбібіцію їх гемоглобіном, який звільняється із гемолізованих еритроцитів.
Огляд органів черевної порожнини починають з дослідження печінки, нирок, селезінки, після чого досліджують шлунок і кишечник, а потім органи тазової порожнини.
Дослідження печінки. У дрібних тварин її не відокремлюють від інших органів черевної порожнини, у великих – відділяють, попередньо перевіривши прохідність жовчовивідних шляхів (у великої рогатої худоби надавлюють на жовчний міхур і спостерігають за виділенням жовчі у дванадцятипалу кишку). Печінку оглядають ззовні з боку діафрагмальної та вісцеральної поверхні, звертаючи увагу на стан капсули, колір та розміри печінки, її консистенцію. У нормі капсула печінки рівна, гладенька, блискуча, а при цирозі може набувати вигляду шагреневої шкіри (дрібні підвищення і западинки) або навіть бути зморшкуватою. За кольором печінки виявляють патологічні процеси в ній. Так, при білковій зернистій дистрофії вона може змінювати колір від світло-коричневого до сіро-коричневого і сірого; при жировій дистрофії забарвлення змінюється від сіро-жовтого до жовтого; при механічній жовтяниці вона може набувати коричнево-зеленуватого кольору; при гострій застійній гіперемії печінка стає темно-червоною з ціанотичним відтінком; при токсичній дистрофії вона плямисто забарвлюється в сіро-жовтуватий колір. Тому при її огляді кольору приділяють особливу увагу. Потім печінку прощупують, визначаючи її консистенцію. За відсутності патології вона має пружну консистенцію. Якщо розвивається цироз, то печінка стає ущільненою або навіть щільною (при біліарному цирозі жовчовивідні шляхи значно потовщуються і набувають консистенції хряща). З розвитком дистрофічних змін консистенція печінки стає в’ялуватою або навіть в’ялою (легко розривається при пальпації).
Печінка може змінювати і свої розміри (збільшуватись або зменшуватись). Це можна спостерігати за напруженістю капсули і станом вентральних країв. Якщо печінка збільшена, то її капсула напружена і на розрізі краї капсули злегка розходяться, а вентральні краї печінки стають більш заокругленими. Зменшення печінки найчастіше виявляють при атрофічних цирозах, коли капсула стає зморшкуватою, краї органа заокруглюються, а консистенція стає щільною. За розвитку білкової зернистої дистрофії або гострої застійної гіперемії печінка злегка збільшується, а при інтенсивно вираженій інфільтративній жировій дистрофії – може збільшуватися більш ніж у 2 рази.
На розрізі печінки визначають її колір, вологість та малюнок паренхіми. Колір її здебільшого буває таким же, як і з поверхні. Інколи забарвлення може змінюватись тільки в капсулі (при аскаріозі у свиней печінка набуває сірого плямистого вигляду, а на паренхіму цей процес не поширюється).
Суттєво може змінюватись і вологість паренхіми. У нормі вона помірно волога. При застої крові печінка стає вологою, а з розвитком дистрофічних явищ паренхіма стає сухуватою. Таким чином, патологічні явища в печінці виявляють за комплексом змін, що можна спостерігати ззовні органа (колір, консистенція, розміри, стан капсули) та на розрізі (колір, вологість, малюнок). Під терміном “малюнок” розуміють збереженість природної структури паренхіми.
Дослідження нирок. У птахів нирки розташовані і міцно зафіксовані в заглибинах кісток крижово-поперекового відділу хребта. Тому їх можна досліджувати, не вилучаючи повністю з місця фіксації. У ссавців вони локалізуються переважно під поперековими хребцями, оточені жировою тканиною, тому їх легко відділити. Спочатку оглядають жирову тканину, що оточує нирки, а потім і сам орган. Нирку невеликих розмірів розташовують воротами в долоню лівої руки, притискують чотирма пальцями до долоні і роблять глибокий поздовжній розріз через випуклу поверхню. Якщо нирка великих розмірів і в руці не поміщається, то її притискують до секційного столу рукою й аналогічним чином розрізають. Потім хірургічним пінцетом по краю розрізу захоплюють капсулу і відокремлюють її від нирки (важко капсула відділяється при розвитку хронічних запалень у нирках). Це дає можливість оглянути нирку ззовні, звернувши увагу на її колір, наявність крововиливів, інфарктів, постінфарктних рубців тощо. Потім оглядають орган на розрізі, звертаючи увагу на кіркову і мозкову речовини, уміст ниркових мисок, їх слизову оболонку і стан підслизової сполучної тканини. Кіркова речовина в нормі має червоно-коричневе забарвлення, а при розвитку дистрофічних процесів може набувати світло-коричневого, сіро-коричневого, сірого, сіро-жовтого і навіть жовтого забарвлення. Малюнок органа визначають за станом кіркової речовини по всьому периметру розрізу, порівнюючи чіткість радіальності канальців у ділянках малозміненого природного забарвлення і в ділянках із зміненим кольором. Звертають увагу на мозкову речовину, яка має сіро-червонуватий колір. Часто в ній розвивається гостра застійна гіперемія і при значній її інтенсивності мозкова речовина може набувати темно-червоного забарвлення.
Краніально чи краніо-медіально від нирок розташовані надниркові залози. При дослідженні визначають їх розміри, форму та консистенцію. На розрізі визначають колір та малюнок. Кірковий шар має сіро-жовтувате забарвлення, а мозковий – коричневе. Межа між шарами чітко визначена.
Завершують дослідження видільної системи оглядом сечового міхура, який розташований у тазовій порожнині. Якщо він пустий, то розміщується на лобкових кістках, а при значному наповненні – звисає в черевну порожнину. Визначають наповнення його сечею, перевіряють прохідність сечовипускного каналу, натискуючи на міхур, а потім обережно розрізають. Звертають увагу на колір сечі, її прозорість, стан слизової оболонки та сторонній вміст (камені).
Дослідження селезінки. У свиней, коней, собак селезінка з’єднана з великим сальником, а в жуйних вона прикріплена до рубця. Спершу визначають, чи вона не збільшена і якої консистенції. Якщо селезінка не збільшена, то краї її загострені і рівномірно прилягають до секційного стола. При збільшенні селезінки краї заокруглюються, капсула стає напруженою і при розрізі її краї розходяться. Враховуючи те, що селезінка є депо крові, то при певних захворюваннях вона може виштовхувати в кровоносне русло депоновану кров, і капсула набуває злегка зморшкуватого вигляду. Консистенція селезінки також може змінюватися від пружної до в’ялої (септичні хвороби), а інколи ставати ущільненою (диплококова септицемія). Селезінку розрізають по всій довжині, складають удвоє вздовж розрізу і визначають колір, вологість і малюнок паренхіми. Вважають малюнок органа вираженим, коли на червоно-коричневому фоні червоної пульпи виділяються фолікули селезінки (біла пульпа). Потім визначають стан паренхіми, тобто, розм’якшена вона чи ні. Для цього тупим боком ножа злегка проводять по розрізу селезінки. Якщо паренхіма не розм’якшена, то на ножі залишається невелика кількість крові, а при гострих септичних хворобах – певна кількість паренхіми (селезінка розм’якшена).
Дослідження шлунка. У тварин з однокамерним шлунком дослідження проводять наступним чином. Звертають увагу на наповнення його кормовими масами або здуття газами. В останньому випадку його обережно проколюють кінчиком скальпеля і випускають гази, а потім розрізають шлунок ножицями. Розріз проходить по боковій його поверхні між великою і малою кривизною від кардіальної частини до входу у дванадцятипалу кишку. Слід пам’ятати, що розріз по великій кривизні робити не варто, оскільки найчастіше уражується фундальна частина шлунка, а її розріз значною мірою погіршує огляд цілісної картини патології. Розрізавши шлунок, звертають увагу на стан кормових мас: колір, консистенцію, із чого вони складаються (грубий корм, концентрований корм, згорнуте молоко та ін.), які містить домішки, іноді звертають увагу на його запах (при отруєнні фосфідом цинку кормові маси набувають запаху часнику). Особливо необхідно оглядати кормові маси, що прилягають до слизової оболонки дна шлунка. Це дає можливість диференціювати слизовий і геморагічний катари. При слизовому катарі кормові маси покриваються значною кількістю густого тягучого слизу, а при геморагічному – просочуються геморагічним ексудатом і набувають червоного забарвлення різної інтенсивності. Певного значення набуває і склад кормових мас. Так, при розтині трупів поросят незадовільної вгодованості часто в шлунку виявляють подрібнений грубий корм і сліди концентратів. А відомо, що такий корм не є властивим для цих тварин, і в раціон їх можуть включати сінне або трав’яне борошно.
Після огляду шлунок звільняють від кормових мас, а слизову оболонку промивають водою від залишків корму і звертають увагу на її колір, чим покрита, чи не містить дефектів тощо. Найбільш частою патологією слизової оболонки шлунка є запалення. При гострих запальних процесах вона набрякає, набуває червоного забарвлення і навіть стає розпушеною (геморагічне запалення). Кормові отруєння, крім запалення, супроводжуються утворенням ерозій слизової оболонки, контури яких обмежені коричневою смужкою (внаслідок утворення пігменту крові – солянокислого гематину). Хронічні запальні процеси шлунка супроводжуються потовщенням і складчастістю слизової оболонки внаслідок активізації проліферативних процесів у ній. Ознаки запальної гіперемії поступово зникають, поступаючись проліферативним. Інколи в слизовій оболонці можуть виявляти виразки, рідше – іншу патологію.
У великої та дрібної рогатої худоби дослідження шлунка починають з огляду лімфатичних вузлів. При здутті передшлунків їх звільняють від газів, зробивши прокол стінки. Слід вміти відрізняти прижиттєве здуття рубця від посмертного. У першому випадку органи черевної порожнини анемічні, виявляється застій крові у передній ділянці тіла. Посмертне здуття не супроводжується таким перерозподілом крові. Для зручнішого дослідження камер шлунка їх розправляють в одну лінію, попередньо роз’єднавши зв’язки між рубцем, сіткою, книжкою і сичугом. Дослідження починають з рубця, хоч така послідовність може порушуватися при наявності травматичного ретикулоперитоніту. Розріз рубця проводять із місця проникнення в нього стравоходу по боковій поверхні дорсального півмішка з переходом на бічну поверхню вентрального півмішка. Визначають кількість корму, його консистенцію та склад, наявність бродильних процесів, запах корму та присутність стороннього вмісту, яким можуть бути земля, пісок, синтетичні волокна, що використовуються для тюкування сіна. Згодом оглядають слизову оболонку, промиваючи її від кормів. Слід пам’ятати, що в несвіжому трупі внаслідок аутолітичних процесів слизова оболонка передшлунків може легко відділятись.
Оглянувши рубець, досліджують сітку. Розріз її – в напрямі книжки. Вміст сітки досліджують таким же чином, як і рубця. У сітці часто можуть виявлятися сторонні металеві предмети (гвіздки, куски дроту та ін.), що зумовлюють травмування її стінки і навіть перфорацію – травматичний ретикулоперитоніт.
Книжку розрізають по великій кривизні, звертаючи увагу на стан кормових мас (при атонії передшлунків кормові маси можуть висихати, створюючи непрохідність книжки), листочків книжки і слизової оболонки. У новонароджених телят на конусоподібних сосочках, що розташовані на межі сітки з книжкою, часто виявляють нашарування рогової речовини завдовжки до 10 мм у вигляді гачків. Такі зміни свідчать про дефіцит вітаміну А в період внутрішньоутробного розвитку.
Сичуг розрізають по малій кривизні, оскільки патологічні процеси найчастіше розвиваються в його фундальній ділянці. Звертають увагу на наповнення його кормовими масами, їх склад і консистенцію, наявність стороннього вмісту, стан слизової оболонки та товщину його стінки. Стороннім вмістом у молодняку можуть бути пілобезоари. Найбільш частою патологією в сичузі є запальні процеси, які виявляються за кольором слизової оболонки і вмісту сичуга, наявністю великої кількості слизу, розпушенням і набряком слизової оболонки. Потовщуватися стінка сичуга може за розвитку хронічного слизового катару або при захворюванні лейкозом. У першому випадку слизова оболонка зібрана у множинні складки, що не розправляються. Таке потовщення зумовлене розростанням сполучної тканини в підслизовій основі. У другому – воно спричинене розмноженням малодиференційованих клітин на місці локалізації місцевих лімфатичних агрегатів слизової оболонки (розростання у вигляді сірої жироподібної тканини).
Дослідження тонкого і товстого кишечнику починають з огляду брижі і брижових лімфовузлів. Звертають увагу на наявність жиру в брижі, наповненість її кровоносних судин кров’ю.
Лімфатичні вузли брижі оглядають на всьому протязі кишечнику, звертаючи увагу на їх форму (у свиней та молодняку великої рогатої худоби при туберкульозі вони деформуються), величину, консистенцію, а на розрізі визначають колір, вологість, малюнок. Найбільш частою патологією в лімфатичних вузлах є запалення (серозне, геморагічне, гнійне, рідше – проліферативне) або гіперплазія їх при гемобластозах.
Кишкові петлі спочатку оглядають ззовні, визначаючи їх забарвлення в різних ділянках, наявність нашарувань ниток фібрину, інвагінацій, виразок, здуття та ін. Потім його розрізають. Розрізи роблять кишковими ножицями уздовж місця прикріплення брижі. У коней, жуйних та свиней тонкий кишечник довгий, тому його розрізають не на всьому протязі, а окремі петлі в різних місцях (не менше третини довжини). При цьому звертають увагу на вміст кишечнику (наявність хімусу), його колір, консистенцію, наявність гельмінтів. Найчастіше хімус може змінювати свій колір за розвитку геморагічного ентериту і навіть набувати кров’янистого вигляду. Потім слизову оболонку відмивають водою від вмісту й оглядають її і місцеві лімфоїдні агрегати, які розташовані на протилежній стороні від місця прикріплення брижі. У слизовій оболонці можуть розвиватися гострі та хронічні запалення, формуватися виразки, некрози, ерозії та ін. У коней обов’язково досліджують і магістральні кровоносні судини брижі, оскільки в них можуть розвиватися личинки делафондій і викликати тромбоз або аневризми передньої брижової артерії. Краще це робити в період дослідження грудної і черевної ділянок аорти. За межами діафрагми першою від аорти відходить черевна артерія, за нею – передня брижова. Ці судини розрізають у напрямі від аорти до кишечнику й оглядають їх інтиму.
У птахів та м’ясоїдних тонкий кишечник відносно короткий, тому його розрізають на всьому протязі й оглядають таким же чином, як описано вище.
Дослідження товстого кишечнику починають із сліпої кишки (у птахів є дві сліпі кишки). У свиней, великої рогатої худоби вона відносно невеликих розмірів. ЇЇ розрізають, починаючи з верхівки, за межі проникнення в неї клубової кишки. Звертають увагу на вміст кишки, його колір та консистенцію. Відмивають водою й оглядають слизову оболонку (колір, наявність слизу та ін.) і солітарні фолікули. Слизова оболонка сліпої кишки свиней часто буває пронизана трихоцефалами.
У коней сліпа кишка має великі розміри і чотирма теніями розділена на чотири ряди кишень. Дорсальною зв’язкою вона з’єднана із клубовою кишкою, а вентральною – із дорсальним лівим положенням великої ободової кишки. При дослідженні сліпої кишки спочатку роз’єднують зв’язки, а потім розрізають по лівій боковій тенії від її верхівки до головки. При цьому звертають увагу на вміст та стан слизової оболонки. Інколи в сліпій кишці можуть локалізуватись ентероліти.
Ободова кишка у тварин різних видів має свою особливість будови. Незважаючи на це, її розрізають у різних місцях не менше, ніж на 2/3 довжини, оглядаючи вміст та стан слизової оболонки. У коней ободова кишка великих розмірів і має праве, діафрагмальне, і ліве нижнє та верхнє положення. Зліва, при вході в тазову порожнину, розташований тазовий згин ободової кишки, де найчастіше відбувається застій товстого кишечнику. У коней між ободовою і прямою кишками розташована мала ободова кишка, яка має дві тенії і два ряди кишень. Порядок її дослідження такий же, як і ободової.
Пряму кишку розрізають по всій довжині, звертаючи увагу на її вміст та стан слизової оболонки.
Дослідження головного мозку. У процесі розтину доводиться досліджувати головний мозок і його оболонки. Вилучити головний мозок неушкодженим і дослідити його досить складно. Для цього слід розпилювати або розрубувати черепну коробку. У зв’язку з особливостями будови мозкової частини черепа у різних тварин розпили його мають деякі особливості. Так, у коней поперечний розпил черепа проходить на 1–2 см вище надбрівних дуг. Два інших починаються від країв поперечного розпилу до основи суглобових виростів потиличної кістки, по боковій поверхні великого потиличного отвору. Таким чином, черепна коробка розпилюється у вигляді рівнобедреного трикутника, основа якого розташована над надбрівними дугами, а верхівка спрямована до великого потиличного отвору. Перед проведенням розпилів череп звільняють від шкіри і м’яких тканин. Для зручності фіксації часто відокремлюють нижню щелепу. Слід пам’ятати, що в коней та м’ясоїдних тварин череп відносно тонкий, тому розпили роблять неглибокими, щоб не пошкодити оболонку і тканину мозку. Потім за допомогою долота або гачка секційного молотка, прикладаючи зусилля, знімають верхню частину черепа.
У жуйних поперечний розпил роблять зразу за надбрівними дугами, а у свиней – перед ними. Кістки черепа цих тварин мають пазухи, тому розпили повинні бути значно глибшими, особливо в дорослих тварин. Повністю відпиляна черепна кришка повинна мати незначну рухливість. Якщо рухливості не досягнуто, то окремі місця кісток слід допиляти. Для зручності зняття черепної кришки в жуйних, крім вищезазначених розпилів, роблять четвертий (сагітальний), що сполучує потиличний отвір і поперечний розпил основи трикутника. У такому разі черепна кришка розділяється на дві половини.
Знявши черепну кришку, її оглядають із внутрішньої поверхні, а потім досліджують мозкові оболонки. Тверду мозкову оболонку захоплюють пінцетом і обережно підрізають ножицями по лінії розпилу черепа, розрізаючи її спайки між півкулями, мозочком і півкулями. Після вилучення твердої мозкової оболонки чітко проглядається сітка кровоносних судин і звивини мозку. При запаленні мозку або застійній гіперемії спостерігається інтенсивне наповнення кров’ю венозних судин, набряк м’якої мозкової оболонки та тканини мозку. З-під мозкової оболонки виділяється невелика кількість прозорої рідини (транссудат, ексудат), що свідчить про набряк чи запалення оболонок мозку.
Щоб вилучити головний мозок, голову розташовують вертикально, потиличним отвором донизу. Видаляють мозок пальцями, ручкою скальпеля або складеними широкими браншами ножиць, починаючи з лобної частини. Поетапно підрізають дванадцять пар черепно-мозкових нервів, відділяють гіпофіз, який залишається в ямці “турецького сідла”. Мозок оглядають з усіх боків і розташовують його на столі півкулями догори. Розсунувши півкулі, на рівні дна борозни горизонтально зрізають верхню частину мозку, роблячи доступ до бокового шлуночка. Таким же чином відкривають і другий боковий шлуночок. На дні бокових шлуночків розташовані конічної форми потовщення – амонові роги, які обов’язково досліджуються при підозрі на захворювання сказом.
Перерізавши в ділянці дна борозни мозолисте тіло, розтинають третій мозковий шлуночок, що лежить поблизу чотиригорбикового тіла, а потім оглядають четвертий мозковий шлуночок. Він прикритий мозочком, дном йому служить довгастий мозок, а передньою стінкою великі півкулі. При огляді шлуночків звертають увагу на їх об’єм, характер вмісту. Потім мозок розсікають уздовж на дві рівні половини, оглядають поверхню розрізу, затим, з’єднавши всі частини мозку, проводять поперечні розрізи на відстані 1–1,5 см один від одного, оглядаючи їх. На розрізах мозку можна спостерігати крововиливи, застійну гіперемію і підвищену вологість тканини, її розм’якшення.
Після видалення і дослідження головного мозку проводять сагітальний (поздовжній) розпил черепа для дослідження носових порожнин і придаткових пазух. Лінія розпилу проходить на 1 см зліва або справа від місця прикріплення носової перегородки. При цьому оглядають слизову оболонку носових раковин, лабіринт грабчастої кістки, носову перегородку, яку потім відділяють для обстеження другої носової порожнини. Найбільш часто зміни запального характеру виявляють при інфекційному атрофічному риніті у свиней, ринотрахеїті та респіраторному мікоплазмозі у великої рогатої худоби.
Оформлення документації патолого-анатомічного розтину
Кожен патолого-анатомічний розтин завершується оформленням відповідної документації. Загальноприйнятою формою такого документа є протокол патолого-анатомічного розтину, який є основним лікарським документом про причини смерті тварин. Він складається в період розтину (наслідки дослідження лікар диктує помічнику, який робить записи) або відразу після завершення розтину. За своїм змістом протокол складається із трьох частин: вступної, описової та висновків. У вступній частині вказують номер протоколу розтину, вид, стать, вік трупа тварини і кому вона належала. Потім зазначають, хто, де, коли і в присутності яких осіб проводив розтин. У цій частині детально наводяться анамнестичні дані щодо господарства і конкретної тварини: епізоотична ситуація, умови утримання та годівлі, експлуатація, відомості про виникнення хвороби, перебіг та лікування, дата загибелі та ін.
Описова частина протоколу включає опис наслідків проведеного зовнішнього та внутрішнього оглядів трупа. При цьому користуються простою літературною мовою без вживання спеціальних патолого-анатомічних термінів. Опис органів проводиться чітко, конкретно, детально, тобто, який вони мають вигляд ззовні і на розрізі.
В описовій частині не допускається вживання таких виразів, як “орган у нормі”, “орган без змін”, а слід детально описати результати його дослідження. Послідовність опису органів така ж, як і проведення зовнішнього та внутрішнього оглядів.
Висновок протоколу включає:
– патолого-анатомічний діагноз;
– результати додаткових досліджень;
– власне висновок про причину загибелі тварини.
Патолого-анатомічний діагноз являє собою перелік усіх патологічних процесів, що були виявлені у ході розтину, з використанням спеціальної термінології. Наприклад, “гострий дифузний катаральний ентерит”, “гостра застійна гіперемія в печінці” та ін. Першими пунктами перераховують ті найбільш суттєві зміни, які могли спричинити загибель тварини і характеризують основне захворювання. Так, при кормових отруєннях першими пунктами записують зміни в шлунку та кишечнику, що виникли при взаємодії токсичних речовин із слизовою оболонкою цих органів. Потім описують дистрофічні зміни в печінці, нирках, міокарді та зміни в судинному руслі (застійні явища, крововиливи). Крім основного захворювання, у процесі розтину можуть виявлятися зміни супутньої, ускладнюючої або конкуруючої хвороби. Усі ці зміни перераховують у порядку важливості їх впливу на стан організму. Наприкінці перераховують зміни, що не мають прямого відношення до смерті тварини, але є патологічними.
При проведенні розтину не завжди за виявленими змінами можна точно визначити причину загибелі тварини. Тому для зняття або підтвердження сумнівів проводять додаткові лабораторні дослідження (гістологічні, токсикологічні, бактеріологічні, вірусологічні та ін.). Наслідки таких досліджень наводять після патолого-анатомічного діагнозу.
Найважливішою частиною протоколу розтину є висновок, в основу якого покладено нозологічний принцип. Тобто, тут повинна бути вказана хвороба (нозологічна форма), яка спричинила загибель тварини. Цю частину протоколу лікар формулює, глибоко проаналізувавши анамнестичні дані, патолого-анатомічні зміни, наслідки додаткових досліджень. Слід зазначити, що висновок може мати категоричний і відносний характер. Категоричний характер він має в тих випадках, коли патолого-анатомічні зміни без сумніву вказують на причину загибелі тварини (смерть настала від асфіксії, викликаної гострою тимпанією рубця тощо). Тоді ж, коли необхідно провести додаткові лабораторні дослідження, висновок має відносний характер (зміни, характерні для класичної чуми свиней; зміни, характерні для септичної форми колібактеріозу тощо). Після позитивних результатів додаткових досліджень (виділення збудника, токсинів та ін.) висновок набуває категоричного характеру. Крім того, у ньому зазначають фонове захворювання (на якому фоні розвинулась основна хвороба), конкуруючу, ускладнюючу або супутню хворобу.
Протокол патолого-анатомічного розтину складається фахівцем, який проводив розтин, і ним же підписується із зазначенням дати оформлення цього документа. Вся відповідальність за зміст протоколу покладається на цього ж лікаря. Особи, які були присутні на розтині, теж зобов’язані поставити свій підпис у протоколі. Своїм підписом вони засвідчують факт загибелі конкретної тварини і те, що вони були присутніми при розтині трупа цієї тварини.
Тематика навчальної практики
Ознайомлення з секційним залом, його обладнанням, інструментарієм та правилами особистої гігієни і безпеки праці при проведенні розтину та роботі з трупним матеріалом.
Розгляд загальних вимог до місць розтину з урахуванням запобігання забруднення навколишнього середовища. Транспортування та утилізація трупів. Використання інструментів та спеціального одягу в процесі розтину, його знезараження і зберігання.
Мета розтину трупів тварин: діагностична, навчальна, наукова і за розпорядженням органів дізнання та суду.
Основні етапи розтину трупів сільськогосподарських тварин: збір анамнезу, проведення зовнішнього і внутрішнього огляду, складання патолого-анатомічного діагнозу та висновки про причину загибелі тварини.
Проведення розтину трупа сільськогосподарської тварини за загальноприйнятою схемою з детальним дослідженням різних систем органів, виявленням різних патологічних процесів та узагальнення виявлених змін з метою визначення причини (або причин) загибелі тварини. Оформлення документації за наслідками розтину.
Відпрацювання техніки проведення розтину трупів сільськогосподарських тварин різних видів (курей, поросят, телят) з послідовним та детальним дослідженням, описанням шкіри та її похідних, слизових оболонок, скелетних м’язів, підшкірної клітковини, кровоносних судин, лімфатичних вузлів (зовнішній огляд), органів травлення та дихання, органів виділення, серця та магістральних судин, нервової системи (внутрішній огляд). За наслідками розтину складається патолого-анатомічний діагноз і формулюється висновок, в якому вказується захворювання, що зумовило загибель тварини. Результати розтину оформляються у вигляді протоколу.
Закріплення техніки розтину трупів сільськогосподарських тварин різних видів з веденням протоколу патолого-анатомічного розтину. Детальний аналіз конкретного випадку загибелі тварини, обґрунтування висновку з посиланням на анамнестичні дані та патолого-анатомічні зміни. Відбір матеріалу для гістологічного дослідження та первинна його обробка. Аналіз помилок, які можуть допускатися при оформленні протоколу патолого-анатомічного розтину.
Ознайомлення з роботою Сквирського ветсанутильзаводу: його приміщенням та обладнанням; збір і транспортування трупного матеріалу для переробки; реєстрація трупів і підготовка їх до переробки в вакуумних котлах; переробка сировини та одержання м’ясо-кісткового борошна; перевірка його якості; споруди та їх робота із знезараження стоків.
Ознайомлення з основними етапами проведення гістологічного дослідження: відбір матеріалу; фіксація матеріалу; зневоднення в спиртах зростаючої концентрації; поміщення в індиферентні середовища (целоїдин та парафін); підготовка мікротомних ножів; одержання зрізів на різних типах мікротомів; фарбування зрізів гематоксиліном і еозином, суданом ІІІ, ІV та на виявлення гемосидерину; розгляд гістопрепаратів під мікроскопом з наступною оцінкою одержаних результатів. Ознайомлення з особливостями експрес-методу гістологічного дослідження.
Загальні поняття про музейну справу та виготовлення музейних препаратів (мікропрепаратів): ознайомлення з теоретичними основами виготовлення музейних препаратів; виготовлення розчинів та фіксація відібраного патматеріалу; розміщення в посуді та естетичне оформлення органів з патологічними процесами; ознайомлення з колекцією музейних препаратів з визначенням та описанням в них відповідних патолого-анатомічних змін.
Підведення підсумку проведеної клінічної практики з патологічної анатомії з виставленням диференційованої оцінки.
По завершенні проведення навчальної практики з дисципліни “Патологічна анатомія, розтин і судова ветеринарія” кожен студент повинен знати:
1. Мету і види розтину, основні етапи діагностичного процесу.
2. Організацію місця розтину, знешкодження та утилізацію трупів і трупного матеріалу.
3. Інструменти для розтину та їх використання.
4. Правила відбору патологічного матеріалу для гістологічних, гістохімічних, бактеріологічних, вірусологічних, хіміко-токсикологічних та інших лабораторних досліджень, фіксації та упакування для пересилки, оформлення супровідного документа.
5. Методи і техніку розтину трупів ссавців і птахів.
6. Правила оформлення протоколу патолого-анатомічного розтину.
7. Техніку виготовлення музейних препаратів.
8. Вміти виявляти посмертні зміни та їх диференціювати від патологічних процесів.
9. Розвиток і морфологічний прояв загальнопатологічних процесів (розладів кровообігу та лімфовідтоку, порушення обміну тканинної рідини, дистрофій, некрозів, атрофій, гіпертрофій, гіперплазії, запалень, пухлин, імунопатологічних процесів).
10. Нозологію, патоморфологічні зміни та диференційні ознаки найбільш поширених інфекційних та неінфекційних хвороб сільськогосподарських тварин різних видів.
Студент повинен уміти:
1. Працювати з мікроскопом та гістологічними препаратами.
2. Відбирати і фіксувати патологічний матеріал для гістологічних, гістохімічних та інших видів лабораторних досліджень (бактеріологічних, вірусологічних, хіміко-токсикологічних).
3. Користуватись інструментами для розтину.
4. Правильно методично і технічно робити розтин трупів тварин різних видів.
5. Визначати й описувати характер патологічних процесів в органах і тканинах на основі макро- та мікроскопічних змін.
6. Складати патолого-анатомічний діагноз.
7. Обгрунтувати основне захворювання, його ускладнення і супутні хвороби.
8. Правильно і грамотно оформити документ розтину і супровідну на лабораторне дослідження патологічного матеріалу.
9. Дотримуватися правил техніки безпеки і охорони навколишнього середовища.
10. Організувати місце розтину та забезпечити умови знешкодження трупного матеріалу.
11. Виготовляти музейні препарати для ветеринарно-просвітньої роботи.
Оцінка навчальної практики
Протягом всього терміну навчальної практики студент проводить записи в спеціально відведеному зошиті (з навчальної практики з усіх клінічних дисциплін). Протягом 10 днів керівником проводиться оцінка практики за п’ятибальною шкалою.
Критерії оцінки:
1. Володіння теоретичними основами з розтину, гістологічної техніки та основ безпеки праці;
2. Якісне виконання практичних завдань з клінічної практики;
3. Належне оформлення записів в індивідуальному зошиті з клінічної практики.
Оцінка “відмінно” виставляється студентові, який володіє теоретичними основами з розтину, знає послідовність його проведення і вміє виконати цю роботу, якісно провести фарбування гістопрепаратів, знає основні вимоги безпеки праці та чітко і якісно виконав записи в зошиті з клінічної практики.
Оцінка “добре” виставляється студентові, який володіє теоретичними основами з розтину, але нечітко орієнтується в послідовності його проведення, допускає неточності при опрацюванні основ гістотехніки і безпеки праці та не весь запропонований теоретичний матеріал відображає в робочому зошиті.
Оцінка “задовільно” виставляється студенту, який був присутнім на практиці, але недостатньо засвоїв теоретичні і практичні питання практики, однак має записи в робочому зошиті.
За підсумками наведених вище критеріїв виставляється середня оцінка з клінічної практики.
Література та мультимедійні програми
1. Жаров А.В., Иванов И.В., Стрельников А.П. Вскрытие и патоморфологическая диагностика болезней животных / Под ред. А.В. Жарова. – М.: Колос, 2000. – 400 с.
2. Вскрытие и патолого-анатомическая диагностика болезней сельскохозяйственных животных / А.В. Жаров, И.В. Иванов, А.А. Кунаков и др.; Под ред. В.П. Шишкова, А.В. Жарова и Н.А. Налетова. – М.: Колос, 1981. – 271 с.
3. Добин М.А., Кокуричев П.И. Практикум по ветеринарной патологической анатомии и вскрытию. Изд.2-е, перераб. и доп. – Л.: Колос, 1975. – 295 с.
4. Кокуричев П.И., Добин М.А. Основы судебно-ветеринарной экспертизы. – Л.: Колос, 1977. – 264с.
5. Патолого-анатомическая диагностика болезней птиц / А.В. Акулов, В.М. Апатенко, Б.Ф. Бессарабов и др.; Под ред. В.П. Шишкова. – М.: Колос, 1978. – 440с.
6. Патолого-анатомическая диагностика болезней свиней / А.А. Авроров, А.В. Акулов, Л.Г. Бурба и др.; Под ред. В.П. Шишкова и др. – М.: Колос, 1984. – 335с.
7. Патолого-анатомическая диагностика болезней крупного рогатого скота / А.В. Акулов, В.М. Апатенко, Н.И. Архипов и др.; Под ред. В.П. Шишкова и др. – М.: Агропромиздат, 1987. – 399 с.
8. Практикум по патологической анатомии сельскохозяйственных животных / Л.М. Пичугин, А.В. Акулов. – 2–е изд., испр. и доп. – М.: Колос, 1980. – 288с.
9. Черняк В.З., Добин М.А., Кокуричев П.И. Судебно-ветеринарная экспертиза. – Л. – М.: Сельхозиздат, 1963. – 256 с.
10. Патолого-анатомічний розтин трупів сільськогосподарських тварин з основами судової ветеринарії: Методичні рекомендації для студентів 4–5 курсів факультету ветеринарної медицини і слухачів Інституту післядипломного навчання / І.В. Папченко, Ю.М. Тирсіна. – Біла Церква, 2004.– 47 с.
11. Мультимедійна програма “Послідовність розтину трупів поросят”.
Зміст
Мета та завдання навчальної практики……………………….…………
Загальні положення……………………………….……………..………..
Характеристика бази навчальної практики………….........………..
Інструменти та спецодяг, що використовується
в процесі розтину........................................................................................
Безпека праці при роботі в секційній залі………………….....………...
Послідовність етапів патолого-анатомічного розтину трупів тварин...
Оформлення документації патолого-анатомічного розтину…………...
Тематика навчальної практики…………………………………………..
Оцінка навчальної практики……………………………………………..
Література та мультимедійні програми…………………………………
Методичні вказівки для проведення навчальної практики
з патологічної анатомії
Папченко Іван Васильович
Утеченко Микола Валентинович
Тирсіна Юлія Марківна
Яхновська Олена Володимирівна
Редактор В.І. Д р а ч у к
Комп’ютерна верстка:
Здано до складання . Підписано до друку .
Формат 60х841/16. Ум. др. арк. . Зам. . Тираж 100. Ціна – .
Сектор оперативної поліграфії РВІКВ БДАУ.
09117, Біла Церква, Соборна площа, 8/1; тел.. 3-11-01.